實驗背景：在細胞生物學研究中，單細胞懸液的質(zhì)量直接影響后續(xù)分析與培養(yǎng)結果。傳統(tǒng)手動制備小鼠骨骼肌單細胞懸液，不僅操作繁瑣、耗時費力，還容易因人為操作差異導致細胞活率低、碎片多。今天分享一套標準化儀器制備方案，流程更高效、結果更穩(wěn)定，新手也能輕松上手!
實驗核心目標：借助單細胞懸液制備儀與配套試劑，將小鼠骨骼肌組織快速解離為形態(tài)完整、活率高的單細胞懸液，滿足單細胞測序、細胞培養(yǎng)、流式分析等后續(xù)實驗需求。
實驗材料與儀器清單：
1.實驗材料：
小鼠骨骼肌組織、骨骼肌組織單細胞解離酶(貨號：MJ010)、紅細胞裂解液(貨號：MJ103)、預冷 PBS 緩沖液、臺盤藍染色液。
2.儀器清單：
無菌手術器械套裝(眼科剪、鑷子)、單細胞懸液制備儀、高速冷凍離心機、倒置顯微鏡、無菌 EP 管、精準移液系統(tǒng)。
標準化儀器制備步驟：
1.試劑預處理：
將骨骼肌組織單細胞解離酶置于冰上解凍，全程保持冰浴狀態(tài)備用，避免酶活性流失。
2.小鼠處理與組織取材：
采用斷頸法處死小鼠后，迅速分離出骨骼肌組織，用預冷 PBS 緩沖液反復沖洗，去除表面血液、筋膜等雜質(zhì)。
稱取約 130mg 潔凈的骨骼肌組織，剪碎、放入單細胞懸液制備儀的研磨管中，加入所需酶。
3.儀器消化：
采用斷頸法處死小鼠后，迅速分離出骨骼肌組織，用預冷 PBS 緩沖液反復沖洗，去除表面血液、筋膜等雜質(zhì)。
稱取約 130mg 潔凈的骨骼肌組織，剪碎、放入單細胞懸液制備儀的研磨管中，加入所需酶。
4.紅細胞裂解與清洗：
用 3-5 倍體積的紅細胞裂解液重懸細胞沉淀，冰上孵育 10 分鐘，期間用移液系統(tǒng)輕柔吹打 2-3 次。隨后再次以 4℃、300g 離心 5 分鐘，棄上清后用預冷 PBS 緩沖液清洗重懸 2 次，去除殘留裂解液。
5.細胞重懸與鏡檢質(zhì)控：
用適量 PBS 緩沖液重懸細胞沉淀，取少量細胞懸液與臺盤藍染色液按比例混合，滴加至細胞計數(shù)板上，通過倒置顯微鏡觀察細胞形態(tài)并計算活率。
實驗結果與優(yōu)勢：
1.核心結果：
①胞形態(tài)：經(jīng)儀器制備的細胞透亮圓潤，形態(tài)完整，無明顯細胞碎片和組織殘渣。
②細胞活率：臺盤藍染色檢測顯示，活細胞率穩(wěn)定≥95%，滿足高要求實驗標準。
③細胞數(shù)量：離心后可見明顯細胞沉淀，重懸后的單細胞懸液均勻分散，無團聚現(xiàn)象。
2.儀器制備化優(yōu)勢：
①效率提升：組織破碎、酶解消化等步驟通過儀器標準化完成，全程耗時縮短 30% 以上。
②穩(wěn)定性強：避免手動操作的力度、速度差異，實驗結果可重復性高。
③損傷更?。簝x器研磨和振蕩溫和，減少細胞機械損傷，顯著提升細胞活率。
儀器化制備方案讓小鼠骨骼肌單細胞懸液的制備更高效、更穩(wěn)定，為后續(xù)實驗提供可靠的樣本保障。
